保留時間不重現有兩種不同的情況：既保留時間漂移和保留時間波動。前者是指保留時間僅沿單方向發生變化，而后者指保留時間無固定規律的波動。將此兩種情況區分開來對找到問題的原因往往很有幫助。如，保留時間的漂移往往由柱老化引起；而柱老化不可能引起保留時間的無規律波動。事實上，保留時間漂移的多半原因是不同機理的色譜柱老化，如固定相流失（例如通過水解），色譜柱污染（由樣品或流動相所致）等。保留時間漂移的幾種最常見的原因如下：    

一 色譜柱平衡    如果我們觀察到保留時間漂移，首先應考慮色譜柱是否已用流動相完全平衡。通常平衡需要10-20個柱體積的流動相，但如果在流動相中加入少量添加劑（如離子對試劑）則需要相當長的時間來平衡色譜柱。    

流動相污染也可能是原因之一。溶于流動相中的少量污染物可能慢慢富集到色譜柱上，從而造成保留時間的漂移。應注意：水是很容易污染的流動相成分。    

二 固定相穩定性    固定相的穩定性都是有限的，即使在推薦的PH范圍內使用，固定相也會慢慢水解。例如，硅膠基質在pH4時水解穩定性更好。水解速度與流動相類型和配體有關。雙官能團配體和三官能團配體比單官能團配體的鍵合相要穩定；長鏈鍵合相比短鏈鍵合相穩定；烷基鍵合相比氰基鍵合相穩定的多。    

經常清洗色譜柱亦會加速色譜柱固定相的水解。其他硅膠基質鍵合相在水溶液環境中也可以發生水解，如氨基鍵合相等。    

三 色譜柱污染    保留時間漂移的另一個常見原因是色譜柱污染。HPLC色譜柱是非常有效的吸附性過濾器，它可以過濾并吸附流動相攜帶的任何物質。污染源可以是：流動相本身，流動相容器，連接管、泵、進樣器和儀器密封墊，以及樣品等。通常通過實驗可判斷污染的來源。    

樣品中如果存在色譜柱上保留很強的組分，就可能是使保留時間漂移的潛在根源。這些根源通常是樣品基質。如：配藥中的賦形劑，生化樣品（如血清）中的蛋白及類脂類化合物，食品樣品中的淀粉，環境水樣中的腐殖酸等。通常樣品中的強保留組分具有較高的分子量，在此情況下，保留時間漂移的同時或其后會有反壓的增加?？梢酝ㄟ^使用固相提取（SPE）等樣品前處理方法來去除樣品基質的影響。    

避免色譜柱污染最簡單的方法是防患于未然。相比之下，找到問題的所在并設計有效的清洗步驟以去除污染物要困難的多。通常使用在給定色譜條件下的強溶劑，但并非所有污染物都可以在流動相中溶解。如THF可去除反相色譜柱中的許多污染物，但蛋白在THF中就不能溶解。DMSO常常用于去除反相色譜柱中的蛋白。    

使用保護柱是個非常有效的方法。反沖色譜柱僅是不得已時采用的辦法。    

四 流動相組成    流動相組成的緩慢變化也是保留時間漂移的常見原因。如流動相中易揮發組分的揮發及循環使用流動相等。    

五 疏水坍塌    當小孔徑、端基封口良好的反相填料色譜柱使用接近100%的水為流動相時，有時會發生分離突然喪失及被分析物質保留明顯降低或完全不保留的現象，這就是疏水坍塌。此現象是由流動相不浸潤固定相表面而致。挽救的辦法實現用含大量有機組分的流動相浸潤固定相，再用高水含量的流動相進行平衡。色譜柱長期儲存也會發生此現象。使用內嵌極性基團的反相色譜柱（如Waters  SymmetryShield RP色譜柱）或非端基封口的色譜柱（如Waters  Resolve色譜柱）也可避免發生坍塌。

（一）保留時間變化    ①柱溫變化--柱恒溫    ②等度與梯度間未能充分平衡--至少用10倍柱體積的流動相平衡柱    ③緩沖液容量不夠--用>25mmol/L的緩沖液    ④柱污染--每天沖洗柱    ⑤柱內條件變化--穩定進樣條件,調節流動相    ⑥柱快達到壽命--采用保護柱

（二）保留時間縮短    

①流速增加--檢查泵,重新設定流速      

②樣品超載--降低樣品量    

③鍵合相流失--流動相PH值保持在3~7.5;檢查柱的方向    

④流動相組成變化--防止流動相蒸發或沉淀    

⑤溫度增加--柱恒溫

（三） 保留時間延長    

①流速下降--管路泄漏,更換泵密封圈,排除泵內氣泡    

②硅膠柱上活性點變化--用流動相改性劑,如加三乙胺,或采用堿至鈍化柱    

③鍵合相流失-- 同前（二）3              

④流動相組成變化--同前（二）4    

⑤溫度降低--同前（二）5